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第一部分 总论3

第1章　绪论3

1.1　动物生理学实验及其方法3

1.1.1　离体实验方法3

1.1.2　在体实验3

1.2 动物生理学实验课的教学内容和目的4

1.3　动物生理学实验课的要求4

1.3.1　实验前4

1.4　动物生理学实验报告的撰写5

1.3.3　实验后5

1.3.2　实验时5

第2章　动物生理学实验常用仪器、设备7

2.1　刺激系统8

2.1.1　电子刺激器8

2.1.2　刺激隔离器10

2.1.3 电极10

2.2　引导、换能系统12

2.2.1　机械引导（传动）装置12

2.2.2　换能器14

2.3.1　生物放大器的基本要素16

2.3　信号调节放大系统——生物电放大器16

2.3.2　微电极放大器17

2.4　显示、记录系统18

2.4.1　二道生理记录仪18

※2.4.2 SBR-1型二线示波器21

2.5　计算机生物信号采集处理系统在生理学实验中的应用22

2.5.1　计算机生物信号采集处理系统的基本组成和工作原理22

2.5.2　计算机生物信号采集处理系统的基本操作24

2.5.3　刺激器的设置26

2.5.4　换能器定标26

3.1.1　常用手术器械28

第3章　动物生理学实验的基本操作技术28

3.1　动物生理学实验常用手术器械28

3.1.2　手术器械的消毒方法30

3.2　实验动物、实验用动物及其选择31

3.2.1　实验动物的种类和特性32

3.2.2　实验动物的选择33

3.3　实验动物的编号、捉拿、固定方法34

3.3.1　动物编号方法34

3.3.2　动物捉拿和固定方法34

3.4　实验动物的给药方法37

3.4.1　经口投药法37

3.4.2　注射给药38

3.5　动物的麻醉41

3.5.1　麻醉前的准备工作41

3.5.2　全身麻醉41

3.5.3　局部麻醉42

3.5.4　麻醉效果的观察42

3.5.5　麻醉注意事项43

3.6　实验动物的采（取）血与处死方法43

3.6.1　实验动物的采（取）血方法43

3.6.2　实验动物的处死方法44

3.7.2　切口和止血45

3.7.1　除去被毛45

3.7　组织分离和插管术45

3.7.3　肌肉、神经、血管的分离46

3.7.4　插管术47

3.8　动物实验意外事故的处理50

3.8.1　麻醉过量和窒息50

3.8.2　大出血50

第4章　动物生理学研究性实验的程序与基本要求51

4.1　动物生理学实验设计51

4.1.1　立题51

4.1.2　实验设计52

4.2.2　预备实验56

4.2　筛选与预备性实验56

4.2.1　初步筛选56

4.3　实验结果的观察、记录及其处理57

4.3.1　实验及其结果的观察和记录57

4.3.2　实验结果的处理58

4.3.3　研究（实验）的结论58

4.4　生理学实验研究论文的撰写59

第二部分 各论63

第5章　细胞的基本功能63

实验5.1　坐骨神经－腓肠肌标本制备63

实验5.2　刺激强度对肌肉收缩的影响66

实验5.3　刺激频率对肌肉收缩的影响69

实验5.4　心肌收缩的特点72

实验5.5　神经干复合动作电位及其传导速度的测定74

实验5.6　神经兴奋不应期的测定78

实验5.7　强度－时间曲线的测定79

实验5.8　蛙坐骨神经－腓肠肌标本中神经、肌肉兴奋时的电活动和肌肉收缩的综合观察81

实验5.9　影响神经动作电位传导速度的因素（实验设计）82

第6章　血液生理84

实验6.1　红细胞比容的测定84

实验6.2　血红蛋白的测定85

实验6.3　红细胞沉降率的测定89

实验6.4　红细胞脆性的测定90

实验6.5　血细胞计数91

实验6.6　出血时间的测定95

实验6.7　凝血时间的测定96

实验6.8　影响血液凝固的因素97

实验6.9　ABO血型鉴定和交叉配血实验99

实验6.10　实验设计101

第7章　血液循环生理102

实验7.1　蛙心起搏点观察102

实验7.2　鱼类心脏的期前收缩与代偿间歇103

实验7.3　心脏灌流107

实验7.4　心音听诊110

实验7.5　微循环观察112

实验7.6　交感神经对血管和瞳孔的作用114

实验7.7　蛙心电图和容积导体的导电规律115

实验7.8　禽与哺乳动物的心电图描记118

实验7.9　鱼类心电图的描记121

实验7.10　心血管活动的神经体液调节122

实验7.11 家兔的心电图和左心室内压的同步观察128

实验7.12　影响心输出量的因素（实验设计）130

实验8.1　大鼠离体肺静态顺应性的测定134

第8章　呼吸生理134

实验8.2　呼吸运动的调节137

实验8.3　膈肌电活动的记录140

实验8.4 呼吸运动、胸内负压及隔神经放电的同步观察141

实验8.5　鱼类呼吸运动及重金属离子对鱼类洗涤频率的影响145

第9章　消化生理147

实验9.1　离体小肠平滑肌的生理特性147

实验9.2　唾液分泌的观察151

实验9.3　唾液、胰液和胆汁的分泌153

实验9.5　在体小肠运动的记录157

实验9.4 胃内容物的分层分布157

实验9.6 胃肠运动的直接观察160

实验9.7　家禽的食管切开术与假饲实验163

实验9.8　大白鼠胃液分泌的调节167

实验9.9　反刍动物咀嚼与瘤胃运动的描记168

实验9.10　瘤胃内容物在显微镜下的观察170

实验9.11　反刍的机制171

实验9.12　小肠的吸收173

实验9.13 外源性胆囊收缩素（cck）对动物摄食行为的调控（实验设计）175

第10章　能量代谢与体温调节生理177

实验10.1　小白鼠能量代谢的测定177

实验10.2　温度对鱼类耗氧量的影响181

实验10.3　动物体温的测定184

实验10.4　甲状腺素对代谢的影响186

第11章　泌尿与渗透压调节188

实验11.1　影响尿生成的因素188

实验11.2　肾小球血流的观察191

实验11.3　鱼类渗透压调节192

实验11.4　循环、呼吸、泌尿综合实验193

第12章　神经与感觉生理197

实验12.1　脊髓反射的基本特征和反射弧的分析197

实验12.2 大脑皮层运动机能定位和去大脑僵直200

实验12.3　去小脑动物的观察203

实验12.4　肌梭传入冲动的观察205

实验12.5　破坏动物—侧迷路的效应207

第13章　生殖、内分泌生理209

实验13.1 甲状腺对蝌蚪变态的影响209

实验13.2 甲状旁腺切除与骨骼肌痉挛的关系211

实验13.3　胰岛素、肾上腺素对血糖的影响212

实验13.4　肾上腺摘除动物的观察213

实验13.5　血中甲状腺素的放射免疫测定215

实验13.6　促黄体生成素的放射受体测定218

实验13.7　乳中孕酮的酶联免疫测定221

实验13.8　啮齿动物动情周期的检查225

实验13.9　雄激素对鸡冠发育的作用226

实验13.10　精子的氧耗强度227

实验13.11　精子活力的测定228

实验13.12　激素对未成熟的雌性小鼠生殖器官的作用229

实验13.13　金鱼的应激反应230

实验13.14　鱼类的性外激素232

实验13.15　鱼类的体色（实验设计）233

实验13.16　乳羊的排乳反射234

实验13.17　生长素促进动物生长作用的观察（实验设计）235

附录1 常用生理溶液、试剂、药物的配制与使用236

1．常用生理溶液的成分及配制方法236

2．消毒液、洗液的配制237

3．脱毛剂的配制239

4．特殊试剂的保存方法239

5．常用血液抗凝剂的配制及用法240

6．几种实验动物常用麻醉药物的参考剂量241

附录2　实验动物的生理指标243

1．常用实验动物的一般生理常数参考值243

2．常用实验动物血液学主要生理常数243

3．常用实验动物白细胞分类计数参考值（％）244

附录3　实验参数配置表245

参考文献247